Galería de mapas mentales GB 4789.35-2023 Detección de bacterias del ácido láctico
La nueva versión del estándar nacional para pruebas de bacterias ácido lácticas incluye documentos normativos de referencia, Términos y definiciones, equipos y materiales, Medios de cultivo y reactivos, procedimientos de prueba, etc.
Editado a las 2024-02-06 18:57:14,Este es un mapa mental sobre una breve historia del tiempo. "Una breve historia del tiempo" es una obra de divulgación científica con una influencia de gran alcance. No sólo presenta los conceptos básicos de cosmología y relatividad, sino que también analiza los agujeros negros y la expansión. del universo. temas científicos de vanguardia como la inflación y la teoría de cuerdas.
¿Cuáles son los métodos de fijación de precios para los subcontratos de proyectos bajo el modelo de contratación general EPC? EPC (Ingeniería, Adquisiciones, Construcción) significa que el contratista general es responsable de todo el proceso de diseño, adquisición, construcción e instalación del proyecto, y es responsable de los servicios de operación de prueba.
Los puntos de conocimiento que los ingenieros de Java deben dominar en cada etapa se presentan en detalle y el conocimiento es completo, espero que pueda ser útil para todos.
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POE de prueba de bacterias del ácido láctico
Pasos
Preparación de la muestra
1. Todos los procesos de preparación de muestras deben seguir procedimientos operativos estériles. 2. El diluyente debe precalentarse completamente a 36 ℃ ± 1 ℃ durante 15 min ~ 30 min antes de realizar la prueba. 3. Las muestras congeladas se pueden descongelar entre 2°C y 5°C durante no más de 18 horas, o a una temperatura no superior a 45°C durante no más de 15 minutos. 4. Muestras sólidas y semisólidas: pesar 25 g de la muestra mediante procedimientos asépticos, colocarla en un frasco estéril que contenga 225 ml de diluyente (en el frasco hay preestablecidas de 5 a 10 perlas de vidrio estériles) y agitar con un oscilador 2 veces. , 30 segundos cada vez, para hacer una solución homogénea de muestra 1:10. 5. Muestras líquidas: para muestras líquidas, agítelas bien y luego use una pajita esterilizada para tomar 25 ml de la muestra y colóquela en una botella esterilizada que contenga 225 ml de diluyente (en la botella hay preestablecidas de 5 a 10 perlas de vidrio esterilizadas). Utilice un oscilador para agitar dos veces, 30 segundos cada vez, para preparar una solución homogénea de muestra 1:10.
Nota: Para muestras sólidas o semisólidas (viscosidad de la muestra > leche cruda), se requiere el método de pesaje para la preparación y dilución de la muestra. Al pesar, evite esparcir la muestra fuera del matraz y en la boca y la pared interior del matraz para evitar la pérdida de muestra debido a la imposibilidad de disolver parte de la muestra.
Dilución y cultivo
1. Utilice una pipeta o micropipeta estéril de 1 ml para absorber 1 ml de la solución homogénea de muestra 1:10 e inyéctela lentamente a lo largo de la pared del tubo en un tubo de ensayo estéril que contenga 9 ml de diluyente (tenga en cuenta que la punta de la pipeta o micropipeta No toque el diluyente), use un oscilador para agitar el tubo de ensayo 3 veces, 10 segundos cada vez, para preparar una solución homogénea de muestra 1:100. 2. Tome otra pipeta o punta de micropipeta estéril de 1 ml y realice incrementos de 10 veces en la homogeneización de la muestra de acuerdo con la secuencia de operación anterior. Para cada dilución incremental, utilice una pipeta o punta de pipeta estéril de 1 ml.
Recuento de bacterias del ácido láctico
Número total de bacterias del ácido láctico.
Recuento de bifidobacterias
Según la estimación del contenido de bifidobacterias de la muestra que se va a analizar, seleccione de 2 a 3 diluciones apropiadas consecutivas. Para cada dilución, extraiga 1 ml de solución homogénea de muestra en una placa esterilizada y haga dos placas para cada dilución. Después de transferir el diluyente a la placa, vierta de 15 a 20 ml del medio de agar MRS modificado con sal de litio de mupirocina y clorhidrato de cisteína enfriado entre 48 °C y 50 °C en la placa y gire la placa para mezclar uniformemente. . Después de que el medio de cultivo se solidifique, colóquelo boca abajo para el cultivo anaeróbico a 36 °C ± 1 °C. De acuerdo con las características de crecimiento de Bifidobacterium, generalmente opte por cultivar durante 48 horas. Si las colonias no crecen o crecen pequeñas, puede hacerlo. Elija cultivar hasta 72 horas. Después del cultivo, cuente todas las colonias en la placa. El proceso desde la dilución de la muestra hasta el vertido en placa debe completarse en 15 minutos.
Recuento de Streptococcus thermophilus
Según la estimación del número de bacterias Streptococcus thermophilus viables en la muestra que se va a analizar, seleccione de 2 a 3 diluciones apropiadas consecutivas. Para cada dilución, tome 1 ml de solución homogénea de muestra en una placa esterilizada y haga dos placas para cada dilución. . Después de transferir el diluyente a la placa, vierta de 15 a 20 ml de medio de cultivo de agar MC enfriado a entre 48 °C y 50 °C en la placa a tiempo y gire la placa para mezclar uniformemente. Una vez solidificado el medio de cultivo, colóquelo boca abajo para cultivo aeróbico a 36 °C ± 1 °C. Según las características de crecimiento de Streptococcus thermophilus, el cultivo generalmente se selecciona durante 48 horas si la colonia no crece o crece pequeña. , se puede cultivar durante 72 horas. Las características de las colonias de Streptococcus thermophilus en placas de agar MC son: colonias medianas a pequeñas, colonias rojas con bordes limpios y lisos, de 2 mm ± 1 mm de diámetro y colonias rosadas en el dorso.
recuento de lactobacilos
Según la estimación del número total de bacterias viables en la muestra que se va a analizar, seleccione de 2 a 3 diluciones apropiadas consecutivas. Para cada dilución, extraiga 1 ml de solución homogénea de muestra en una placa esterilizada y haga dos placas para cada dilución. Después de transferir el diluyente a la placa, vierta de 15 a 20 ml del medio de agar MRS enfriado entre 48 °C y 50 °C en la placa y gire la placa para mezclar uniformemente. Después de que el medio de cultivo se solidifique, colóquelo boca abajo para el cultivo anaeróbico a 36 °C ± 1 °C. De acuerdo con las características de crecimiento de Bifidobacterium, generalmente opte por cultivar durante 48 horas. Si las colonias no crecen o crecen pequeñas, puede hacerlo. Elija cultivar hasta 72 horas. Después del cultivo, cuente todas las colonias en la placa. El proceso desde la dilución de la muestra hasta el vertido en placa debe completarse en 15 minutos.
Incluye recuentos únicamente de Bifidobacterium spp.
Según la estimación del número de bifidobacterias en la muestra que se va a analizar, seleccione de 2 a 3 soluciones homogéneas de muestra con las diluciones adecuadas. Al realizar una dilución incremental de 10 veces, extraiga 1,0 ml de la solución homogénea de muestra en una placa estéril. platos planos. Al mismo tiempo, agregue 1,0 ml de diluyente en blanco en dos placas estériles como controles en blanco. Vierta inmediatamente de 15 ml a 20 ml de medio de agar MRS enfriado a 46 °C (que se puede colocar en un baño de agua a temperatura constante a 46 °C ± 1 °C para aislamiento) en la placa y gire la placa para mezclar uniformemente. El proceso desde la dilución de la muestra hasta el vertido en placa debe completarse en 15 minutos. Después de que el agar se solidifique, voltee la placa e incube en condiciones anaeróbicas a 36°C±1°C durante 48h±2h, que puede extenderse a 72h±2h. Después de la incubación, cuente todas las colonias en la placa.
Nota: 1. Si el elemento de prueba requerido en el estándar de calidad es el número total de bacterias del ácido láctico, el informe de inspección, el registro de inspección original, etc. se basará en GB 4789.35 si el elemento de prueba requerido en el estándar de calidad es el; número de bifidobacterias, el informe de inspección, el registro de inspección original, etc. La base de inspección para etc. debe ser GB 4789.34. 2. El medio de cultivo debe colocarse en un baño de agua para mantener una temperatura constante. No utilice el dorso de la mano para detectar la temperatura. Una temperatura demasiado alta quemará las bacterias. Si la temperatura es demasiado baja, el cultivo. El medio será difícil de mezclar después de la solidificación. Al mismo tiempo, es necesario controlar la temperatura del baño de agua. Puede escribirlo en la columna de resultados de calibración/verificación del "Registro de uso del equipo".
Ejemplos de especies de Lactobacillus y medios de cultivo utilizados para la detección de diferentes elementos.
Nota: Los ejemplos de elementos de la tabla son solo como referencia. El medio de cultivo específico seleccionado debe seleccionarse de acuerdo con los tipos reales de bacterias del ácido láctico incluidas en el producto.
cuenta colonial
1. Seleccione una placa con un recuento de colonias entre 30 UFC y 300 UFC y sin colonias en expansión para contar el número total de colonias. Para placas con menos de 30 UFC, registre el número específico de colonias y para placas con más de 300 UFC, registre el número de colonias como demasiadas para contarlas. El número de colonias para cada dilución debe ser el promedio de dos placas. 2. Cuando una de las placas tiene colonias escamosas más grandes en crecimiento, no se debe usar. En su lugar, se debe usar la placa sin colonias escamosas como el número de colonias en esa dilución si las colonias escamosas son menos de la mitad de la placa; y la mitad restante es La distribución de colonias es muy uniforme, por lo que puedes contar la mitad de la placa y multiplicar por 2 para representar el número de colonias en una placa. 3. Cuando aparezca en la placa un crecimiento de cadena sin límites obvios entre colonias, cuente cada cadena como una colonia.
Nota: 1. Se puede observar a simple vista, y si es necesario utilizar una lupa o contador de colonias para registrar el factor de dilución y el número de colonias correspondiente. Los recuentos de colonias se expresan en unidades formadoras de colonias (UFC). 2. Cuente todas las colonias en la placa MRS. 3. Recuento de colonias típicas de MC: rosa, rosa con un anillo transparente alrededor, se cuentan todas las colonias en ambas formas.
expresión de resultados
1. Si el número de colonias en una sola placa de dilución está dentro del rango de recuento apropiado, calcule el número promedio de colonias en las dos placas y luego multiplique el valor promedio por el factor de dilución correspondiente para obtener el resultado del número total de colonias por gramo o por mililitro. 2. Si el número de colonias en dos placas de dilución en serie está dentro del rango de recuento apropiado, calcule según la fórmula (1): N=∑C/(n1 n2)*d En la fórmula: N——número de colonias en la muestra; ∑C——La suma del número de colonias en una placa (una placa que contiene un rango adecuado de números de colonias); n1——El número de placas de la primera dilución (factor de dilución bajo); n2——El número de placas de la segunda dilución (alta proporción de dilución); d——factor de dilución (primera dilución). 3. Si el número de colonias en las placas de todas las diluciones es superior a 300 UFC, cuente la placa con la dilución más alta. Otras placas pueden registrarse como demasiado numerosas para contar. El resultado se calcula multiplicando el número promedio de colonias por el. factor de dilución más alto. 4. Si el número de colonias en la placa en todas las diluciones es inferior a 30 UFC, el cálculo debe basarse en el número promedio de colonias en la dilución más baja multiplicado por el factor de dilución. 5. Si no hay crecimiento de colonias en las placas de todas las diluciones (incluidas las soluciones originales de muestras líquidas), el cálculo será inferior a 1 multiplicado por el factor de dilución más bajo. 6. Si el número de colonias en placa en todas las diluciones no está entre 30 UFC y 300 UFC, y algunas de ellas tienen menos de 30 UFC o más de 300 UFC, el número promedio de colonias más cercanas a 30 UFC o 300 UFC se multiplicará por el factor de dilución para el cálculo. .
Informe de recuento de colonias.
1. Cuando el número de colonias sea inferior a 100 UFC, se redondeará según el principio de "redondeo" y se informará como un número entero. 2. Cuando el número de colonias es mayor o igual a 100CFU, se redondea el tercer dígito usando el principio de "redondeo", y se toman los dos primeros dígitos, y los siguientes dígitos se reemplazan por 0 también se puede expresar en; la forma de un exponente de 10, según el principio de "redondeo". Después del redondeo, utilice dos cifras significativas. 3. El muestreo de peso se informa en UFC/g y el muestreo volumétrico se informa en UFC/mL.
Nota: 1. Si solo crece una colonia en dos placas: si se analiza la solución original, los resultados se informarán como 1 UFC/mL (g); si se diluye 10 veces, los resultados se informarán como 5 UFC/mL; ml (g); 2. Si el número de colonias en la placa es 2 y 3 después de una dilución de 10 veces, el informe de resultados debe ser 25, no 30; 3. En el informe de resultados de la muestra sólida, si la mantisa es 5 o 0, o la mantisa es otro número, todos los resultados serán incorrectos; 4. Si el número de colonias en dilución alta es mayor que el número de colonias en dilución baja, no se puede informar el resultado; 5. Si las tres diluciones están dentro del rango de conteo, no se pueden informar los resultados; 6. Si todas las diluciones son demasiado numerosas para contarlas, no se podrán informar los resultados; 7. Si los resultados de la prueba de dos diluciones no están dentro del rango de 30-300, los resultados deben unificarse en una dilución y luego compararse para determinar el valor más cercano al rango. Por ejemplo: la dilución alta es 27 y la dilución baja es 320. Debe multiplicar 27 por 10, comparar 270 con 320 y calcular el resultado de la prueba basándose en 320; 8. Si la dilución alta es 28 y la dilución baja es 320, infórmelo como el valor mínimo y reporte 28 veces el factor de dilución.
Resultados e informes
Se emite un informe basado en los resultados del recuento de colonias y la unidad de informe se expresa en UFC/g (mL).
Procedimientos de inspección
Medios de cultivo y reactivos.
Diluyente: reactivo comercial.
Medio agar MRS (Man Rogosa Sharpe): medio comercial.
Medio de cultivo MRS: la peptona, el polvo de extracto de carne y el polvo de extracto de levadura proporcionan fuentes de nitrógeno, fuentes de carbono, vitaminas, minerales y otros nutrientes necesarios para el crecimiento bacteriano; la glucosa sirve como fuente de carbono fermentable, iones de magnesio, etc.; 80, el citrato de triamonio y el acetato de sodio pueden promover el crecimiento de bacterias del ácido láctico y neutralizar sustancias citotóxicas; el agar sirve como tampón como coagulante;
Medio agar MC (Chalmers modificado): medio comercial.
Medio de cultivo MC: la peptona de soja, el polvo de extracto de carne y el polvo de extracto de levadura proporcionan fuentes de nitrógeno, fuentes de carbono, vitaminas, minerales y otros nutrientes necesarios para el crecimiento bacteriano, la glucosa y la lactosa sirven como carbohidratos para promover el crecimiento de las bacterias del ácido láctico y el calcio; carbonato Neutraliza el ácido producido por el metabolismo bacteriano para aliviar su toxicidad ácida para las células. El rojo neutro sirve como indicador ácido-base y desempeña un papel coagulante. El medio de cultivo contiene 10 g/l de carbonato de calcio, que es una sustancia insoluble y necesita; Quede bien mezclado. Una vez homogéneo, verter en el plato. Al mismo tiempo, es normal que la placa tenga un precipitado blanco.
Medio agar MRS modificado con Li-Mupirocina y Clorhidrato de Cisteína: medio comercial.
Medio MRS modificado de sal de litio de mupirocina y clorhidrato de cisteína: peptona, extracto de carne en polvo y extracto de levadura en polvo proporcionan fuentes de nitrógeno, fuentes de carbono, vitaminas, minerales y otros nutrientes necesarios para el crecimiento bacteriano. Elementos de glucosa como fuente de carbono fermentable; los iones de manganeso, iones de magnesio, Tween 80, citrato de triamonio y acetato de sodio pueden promover el crecimiento de bacterias del ácido láctico y neutralizar sustancias citotóxicas; el agar sirve como tampón como coagulante; La sal de litio de mupirocina inhibe otras bacterias del ácido láctico, excepto Bifidobacterium; el clorhidrato de cisteína actúa como agente reductor.
Equipos y Materiales
Además de los equipos de cultivo y esterilización de rutina en los laboratorios de microbiología, otros equipos y materiales son los siguientes: 1. Incubadora de temperatura constante: 36 ℃ ± 1 ℃. 2. Refrigerador: 2 ℃ ~ 8 ℃. 3. Oscilador. 4. Equilibrio: sensibilidad 0,01 g. 5. Tubo de ensayo estéril: 18 mm × 180 mm. 6. Pipeta estéril: 1 ml (con escala de 0,01 ml), 10 ml (con escala de 0,1 ml). 7. Micropipeta y punta estéril: 1000μL. 8. Frascos estériles: 500 ml, 300 ml, 250 ml, 150 ml.
Términos y definiciones
bacterias de ácido láctico Nombre general para un grupo de bacterias que pueden fermentar azúcares y producir principalmente grandes cantidades de ácido láctico. No pueden licuar gelatina, no producen indol, son grampositivas, no móviles, no portadoras de esporas, catalasa negativas. Bacterias nitrato reductasa negativas y citocromo oxidasa negativas. Las bacterias del ácido láctico en esta norma incluyen principalmente Lactobacillus, Bifidobacterium y Streptococcus thermophilus.
Documentos normativos de referencia.
GB 4789.35-2023 "Norma nacional de seguridad alimentaria Pruebas microbiológicas de alimentos Pruebas de bacterias de ácido láctico" y GB 4789.34-2016 "Norma Nacional de Seguridad Alimentaria - Pruebas microbiológicas de alimentos - Pruebas de Bifidobacterium".