Galleria mappe mentale Chimica farmaceutica naturale Determinazione, estrazione e isolamento della struttura degli zuccheri e dei glicosidi
Questa è una mappa mentale sulla chimica medicinale naturale, inclusa l'identificazione della purezza di monosaccaridi e oligosaccaridi, la determinazione della struttura delle catene di zuccheri, l'estrazione e la separazione degli zuccheri, ecc.
Modificato alle 2024-01-16 20:31:36Questa è una mappa mentale su una breve storia del tempo. "Una breve storia del tempo" è un'opera scientifica popolare con un'influenza di vasta portata. Non solo introduce i concetti di base della cosmologia e della relatività, ma discute anche dei buchi neri e dell'espansione dell'universo. questioni scientifiche all’avanguardia come l’inflazione e la teoria delle stringhe.
Dopo aver letto "Il coraggio di essere antipatico", "Il coraggio di essere antipatico" è un libro filosofico che vale la pena leggere. Può aiutare le persone a comprendere meglio se stesse, a comprendere gli altri e a trovare modi per ottenere la vera felicità.
"Il coraggio di essere antipatico" non solo analizza le cause profonde di vari problemi nella vita, ma fornisce anche contromisure corrispondenti per aiutare i lettori a comprendere meglio se stessi e le relazioni interpersonali e come applicare la teoria psicologica di Adler nella vita quotidiana.
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zuccheri e glicosidi
Identificazione della purezza dei monosaccaridi e degli oligosaccaridi
PC (cromatografia su carta)
Sistema di espansione: solventi organici saturi di acqua comunemente usati
Sviluppatore del colore: anilina di acido ftalico (fa apparire lo zucchero riducente marrone e nero)
TLC (cromatografia su strato sottile)
(soluzione di acido borico 0,03 M sale inorganico) gel di silice → produzione di lastre
GC (gascromatografia)
Preparazione dello zucchero come trimetilsilil etere: aumento della sua volatilità
aldoso
Riduzione di NaBH4 a poliolo (evita la formazione di anomeri)
Trasformato in acetile o trifluoroacetile
HPLC (cromatografia liquida ad alte prestazioni)
Materiale di imballaggio: gel di silice chimicamente modificato, come la colonna -NH2
Adatto per l'analisi di oligosaccaridi e polisaccaridi termolabili e non volatili
IEC (cromatografia a scambio ionico)
Complessi di acido borico di zuccheri: capaci di cromatografia a scambio ionico
Non c'è bisogno di fare derivati
Separazione diretta con soluzione acquosa
Determinazione della struttura delle catene degli zuccheri
Processo: Purezza - PM - Composizione dei monosaccaridi - Determinazione della configurazione assoluta dei monosaccaridi - Determinazione delle posizioni di connessione tra monosaccaridi - Determinazione della sequenza di connessione delle catene di zuccheri - Determinazione della configurazione del legame glicosidico e dell'anello di ossigeno
Determinazione della purezza dei polisaccaridi
Ultracentrifugazione
Elettroforesi ad alta tensione (HPCE)
Cromatografia su gel: colonna h:d > 40
Polarimetria: diverse concentrazioni di etanolo↓, confronto
Altri: metodo del rapporto molare del gruppo funzionale, RI, metodo HPLC, ecc.
Determinazione del peso molecolare
metodo tradizionale
Metodo di sedimentazione, metodo di diffusione della luce, metodo di viscometria, metodo di pressione osmotica, metodo di ultrafiltrazione, metodo di ultracentrifugazione
cromatografia su colonna di gel
SM
ESI-MS: protoni a carica singola o multipla
MALDI-TOF-MS: per lo più protoni a carica singola
Determinazione della composizione dei monosaccaridi (idrolisi totale)
computer
Determinazione dello sviluppo del colore: tipo di monosaccaride
TLCS: approssimativamente quantitativo
GC
Soluzione CH3OH → TMS
Utilizzare mannitolo o mio-inositolo come standard interno e monosaccaridi noti come standard.
HPLC
Rivelatore opzionale dell'indice di rifrazione per determinare la configurazione assoluta dei monosaccaridi
Determinazione della configurazione assoluta dei monosaccaridi
Principi di separazione degli enantiomeri
Derivatizzazione, introduzione di nuovi centri chirali → diastereoisomeri
Le colonne cromatografiche sono chirali
metodo
GC
Processo: reagente chirale monosaccaride → diastereomerico → TMS
Metodo: D, L-monosaccaride reagisce con un'unica configurazione di reagente chirale (L-); 1 monosaccaride reagisce con 2 reagenti chirali (D, L-);
HPLC
Reagente chirale: (S)-(-)-1-feniletilammina
Minore consumo di campione; la sensibilità non è elevata quanto quella di GC
Cromatografia chirale: costosa
Rilevatore ottico di rotazione: strumento costoso
Metodo di confronto della rotazione ottica: grande consumo di campione
Determinazione delle posizioni di connessione tra monosaccaridi
Polisaccaride: permetilazione → idrolisi → GC qualitativo e quantitativo
idrolisi
Idrolizzare prima con HCOOH al 90%, poi con H2SO4 o CF3COOH 0,05 M
Soluzione CH3OH: a volte causa la metilazione del sito di connessione dello zucchero, quindi usala con parsimonia!
Oligosaccaridi
1H-NMR: peracetilazione→2D-NMR
Determinazione 13C-NMR: spostamento della glicosilazione
Determinazione della sequenza di connessione delle catene di zuccheri
lieve idrolisi
Idrolizzando le catene di polisaccaridi in frammenti più piccoli e quindi analizzando l'ordine in cui questi oligosaccaridi sono collegati
Metodo NMR
13C-NMR: Tempo di rilassamento T1
2D-NMR
Spettrometria di massa
FAB-MS
Estrazione e separazione dello zucchero
Estrazione dei glicosidi
glicosidi che uccidono gli enzimi
Raccogli materiali freschi
Riscaldamento ed essiccazione rapidi; spesso viene aggiunto carbonato di calcio congelato per prevenire la distruzione degli enzimi durante l'estrazione.
Metodo solvente: acqua; alcool diluito (monosaccaridi, oligosaccaridi, polisaccaridi)
Metodi per la separazione e la raffinazione dei composti zuccherini
raffinato
rimozione delle proteine
Metodo Sevag: soluzione acquosa di polisaccaride di pentanolo (butanolo) CHCl3 5:1:25 → agitare vigorosamente per 20 minuti → centrifugare per eliminare le proteine denaturate tra le due fasi. Metodo del trifluorotricloroetano: soluzione acquosa di polisaccaride CF3-CCl3 1:1 → Agitare per 10 minuti → Centrifugare e raccogliere lo strato d'acqua, due volte. Metodo dell'acido tricloroacetico: aggiungere goccia a goccia 3,13 COOH alla soluzione acquosa del polisaccaride → fino a quando non diventa più torbida → durante la notte a 5~10°C → centrifugare per rimuovere il precipitato. Idrolisi enzimatica: soluzione acquosa di polisaccaride pepsina, tripsina, papaina, pronasi, ecc.
Separazione dei polisaccaridi acidi: metodo di precipitazione dell'idrossido di ammonio quaternario
Caratteristiche: Emulsionante, può formare un precipitato con polisaccaridi acidi; formare un precipitato con polisaccaridi neutri: aumenta il pH della soluzione, o contiene tampone borace (aumento dell'acidità). Sali di ammonio quaternario comunemente usati: CTAB/CP-OH. Funzionamento: 1~10% CTAB o CP-OH, aggiungere goccia a goccia alla soluzione di polisaccaride allo 0,1~1% agitando (pH<9, senza borace); controllare la concentrazione del sale di ammonio quaternario per separare diversi polisaccaridi acidi
Separazione di polisaccaridi di diversa polarità: metodo della precipitazione frazionata o della dissoluzione graduale
Soluzione zuccherina, aggiungere gradualmente etanolo (acetone) → ciascuna parte ↓
I polisaccaridi vengono solitamente effettuati a pH=7 I polisaccaridi acidi vengono lavorati a pH=2~4 Per prevenire l'idrolisi acida dei legami glicosidici, l'operazione dovrebbe essere rapida
Trasformato in prodotti di eterificazione e acetilazione, solubile in alcool
Passo dopo passo Piccolo solvente polare (etere etilico)→↓
separazione cromatografica
Cromatografia su colonna con carbone attivo (non polare)
Sequenza di eluizione: acqua → solvente organico (EtOH): H2O → 10% → 20% → 30% → 50% → 70% EtOH, Quelli più solubili in acqua escono per primi: sali inorganici → monosaccaridi → disaccaridi → trisaccaridi → polisaccaridi
cromatografia su cellulosa
Cromatografia su colonna a scambio ionico
All'aumentare dei gruppi acidi nelle molecole di polisaccaride, aumenta la forza di adsorbimento; per le molecole lineari, quelle con pesi molecolari maggiori sono più facili da adsorbire;
cromatografia su colonna di gel
L'ordine di uscita dalla colonna è che le molecole grandi escono prima dalla colonna, mentre quelle piccole escono successivamente.
elettroforesi a zona preparativa
L'estremità superiore è l'elettrodo positivo e l'estremità inferiore è l'elettrodo negativo.